Ipinapakita ng pag-aaral na ito na ang fungus na nauugnay sa ugat na Kosakonia oryziphila NP19, na nakahiwalay mula sa mga ugat ng palay, ay isang promising na biopesticide na nagpapalago ng halaman at biochemical agent para sa pagkontrol ng rice blast. Isinagawa ang mga in vitro na eksperimento sa mga sariwang dahon ng Khao Dawk Mali 105 (KDML105) aromatic rice seedlings. Ipinakita ng mga resulta na epektibong pinigilan ng NP19 ang pagtubo ng rice blast fungal conidia. Ang impeksyon ng fungus ay napigilan sa ilalim ng tatlong magkakaibang kondisyon ng paggamot: pagbabakuna sa palay gamit ang NP19 at fungal conidia; sabay-sabay na pagbabakuna sa dahon gamit ang NP19 at fungal conidia; at pagbabakuna sa dahon gamit ang fungal conidia na sinundan ng paggamot sa NP19 pagkalipas ng 30 oras. Bukod pa rito, binawasan ng NP19 ang paglaki ng fungal hyphal ng 9.9–53.4%. Sa mga eksperimento sa paso, pinataas ng NP19 ang aktibidad ng peroxidase (POD) at superoxide dismutase (SOD) ng 6.1% hanggang 63.0% at 3.0% hanggang 67.7%, ayon sa pagkakabanggit, na nagpapahiwatig ng pinahusay na mekanismo ng depensa ng halaman. Kung ikukumpara sa mga hindi nahawaang kontrol ng NP19, ang mga palay na nahawaan ng NP19 ay nagpakita ng pagtaas sa nilalaman ng pigment ng 0.3%–24.7%, ang bilang ng buong butil bawat uhay ng 4.1%, ang ani ng buong butil ng 26.3%, ang yield mass index ng ani ng 34.4%, at ang nilalaman ng aromatic compound na 2-acetyl-1-pyrroline (2AP) ng 10.1%. Sa mga palay na nahawaan ng parehong NP19 at blast, ang pagtaas ay 0.2%–49.2%, 4.6%, 9.1%, 54.4%, at 7.5%, ayon sa pagkakabanggit. Ipinakita ng mga eksperimento sa bukid na ang mga palay na kinoloniya at/o binakunahan ng NP19 ay nagpakita ng pagtaas sa bilang ng buong butil bawat uhay ng 15.1–27.2%, ani ng buong butil ng 103.6–119.8%, at nilalaman ng 2AP ng 18.0–35.8%. Ang mga palay na ito ay nagpakita rin ng mas mataas na aktibidad ng SOD (6.9–29.5%) kumpara sa mga palay na nahawahan ng sabog na hindi binakunahan ng NP19. Ang paglalagay ng NP19 sa mga dahon pagkatapos ng impeksyon ay nagpabagal sa paglala ng sugat. Kaya, ang K. oryziphila NP19 ay ipinakita na isang potensyal na bioagent na nagpapasigla ng paglago ng halaman at biopesticide para sa pagkontrol ng sabog ng palay.
Gayunpaman, ang bisa ng mga fungicide ay naiimpluwensyahan ng maraming salik, kabilang ang pormulasyon, tiyempo at paraan ng aplikasyon, tindi ng sakit, ang bisa ng mga sistema ng pagtataya ng sakit, at ang paglitaw ng mga uri na lumalaban sa fungicide. Bukod pa rito, ang paggamit ng mga kemikal na fungicide ay maaaring magdulot ng natitirang toxicity sa kapaligiran at magdulot ng panganib sa kalusugan ng mga gumagamit.
Sa eksperimento sa paso, ang mga buto ng palay ay isterilisado sa ibabaw at pinatubo gaya ng inilarawan sa itaas. Pagkatapos ay tinamnan ang mga ito ng K. oryziphila NP19 at inilipat sa mga tray ng punla. Ang mga punla ay in-incubate sa loob ng 30 araw upang tumubo ang mga punla ng palay. Ang mga punla ay inilipat sa mga paso. Sa proseso ng paglipat, ang mga halamang palay ay nilagyan ng pataba upang ihanda ang mga ito sa impeksyon ng fungus na nagdudulot ng pagsabog ng palay at upang subukan ang kanilang resistensya.
Sa isang eksperimento sa bukid, ang mga tumubong buto na nahawaan ng Aspergillus oryzae NP19 ay ginamot gamit ang pamamaraang inilarawan sa itaas at hinati sa dalawang grupo: mga butong nahawaan ng Aspergillus oryzae NP19 (RS) at mga hindi nahawaan na buto (US). Ang mga tumubong buto ay itinanim sa mga tray na may isterilisadong lupa (pinaghalong lupa, sinunog na balat ng palay, at dumi ng hayop sa 7:2:1 na ratio ayon sa timbang) at ini-incubate sa loob ng 30 araw.
Idinagdag ang conidial suspension ng oryziphila sa R rice at pagkatapos ng 30 oras na incubation, 2 μl ng K. oryziphila NP19 ang idinagdag sa parehong lokasyon. Lahat ng Petri dish ay in-incubate sa 25°C sa dilim sa loob ng 30 oras at pagkatapos ay in-incubate sa ilalim ng patuloy na pag-iilaw. Ang bawat grupo ay kinopya nang tatlong beses. Pagkatapos ng 72 oras na incubation, ang mga seksyon ng halaman ay sinuri at isinailalim sa scanning electron microscopy. Sa madaling salita, ang mga seksyon ng halaman ay inayos sa phosphate-buffered saline na naglalaman ng 2.5% (v/v) glutaraldehyde at inalis sa tubig sa isang serye ng mga solusyon ng ethanol. Ang mga sample ay pinatuyo sa critical-point gamit ang carbon dioxide, pagkatapos ay pinahiran ng ginto at inobserbahan sa ilalim ng scanning electron microscope sa loob ng 15 minuto.
Oras ng pag-post: Oktubre 13, 2025